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Ciências Farmacêuticas
Rotações Laboratoriais/Clínicas II

Rotações Laboratoriais/Clínicas II

Código	11017
Ano	1
Semestre	S2
Créditos ECTS	5
Carga Horária	TP(40H)
Área Científica	Ciências Farmacêuticas/Bioquímica/Medicina/Biomedicina
Tipo de ensino	Presencial
Objectivos de Aprendizagem	a) Compreender os conteúdos e fundamentos teóricos/práticos das técnicas laboratoriais ou clínicas; b) Manipular e executar as técnicas laboratoriais ou clínicas; c) Demonstrar capacidade de compreensão sistemática das técnicas laboratoriais ou clínicas; No final da Unidade Curricular o estudante deve ser capaz de: a) Explicar os fundamentos teóricos/práticos das técnicas laboratoriais ou clínicas; b) Conceber, projetar, adaptar e realizar de modo independente os trabalhos laboratoriais utilizando as técnicas laboratoriais ou clínicas aprendidas nas rotações.
Conteúdos programáticos	r01 - Western Blot (2 pontos, 16h) r02 - Imunohistoquímica (2 pontos, 16h) r03 - Análise da expressão génica por PCR (1 ponto, 8h) r04 – Imunocitoquímica (1 ponto, 8h) r05 – Microscopia de fluorescência (1 ponto, 8h) r06 – Avaliação motora e cognitiva em modelos animais (2 pontos, 16h) r07 – Imunoprecipitação de proteínas (2 pontos, 16h) r08 - Citometria de fluxo (1 ponto, 8h) r09- Contractilidade vascular (1 ponto, 8h) r10- Culturas primárias (1 ponto, 8h) r11 - Ensaios de apoptose (1 ponto, 8h) r12 - Culturas de linhas celulares (1 ponto, 8h) r13- Culturas organotípicas (1 ponto, 8h) r14 - HPLC (1 ponto, 8h) r15 – Microcalorimetria de fluxo (1 ponto, 8h) r16 - Administração de compostos a animais (1 ponto, 8h) r17- Estudos de transporte em Câmaras de Ussing (2 pontos, 12h) r18- Estudos de metabolismo in vitro (2 pontos, 16h) r19 - Biosensor (2 pontos, 16h) r20 - Determinação da estrutura de moléculas por RMN (2 pontos, 16h) r21- Extração/purificação de ácidos nucleico (2 pt, 16h)
Metodologias de Ensino e Critérios de Avaliação	Os estudantes serão avaliados no final de cada uma das Rotações Laboratoriais/Clínicas através da realização de um teste escrito versando a compreensão dos conteúdos, fundamentos e procedimentos experimentais específicos de cada técnica. A classificação final será a média ponderada da classificação obtida em cada uma das Rotações Laboratoriais/Clínicas avaliadas em função dos pontos atribuídos a cada uma das rotações.
Bibliografia principal	Bonner P. Basic Bioscience Laboratory Techniques. Willey-Blackwell 2011; Estridge BH. Basic Clinical Laboratory Techniques. Cengage Learning 2011; Longobardi Givan A. Flow Cytometry First Principles 1992; Neher E. The use of the patch clamp technique to study second messenger- mediated cellular events. Neurosci 1998; Snyder LR et al. Introduction to Modern Liquid Chromatography. John Wiley & Sons; Bernard RE. The Regulation of Animal Research and the Emergence of Animal Ethics. Theor. Med. Bioeth 2006; Regine W et al. Principles of Stereotactic Surgery. Springer 2008; Schwartz DC et al.. Separation of yeast chromosome-sized DNAs by pulsed field gradient gel electrophoresis. Cell 1984; Silverstein RM et al. Spectrometric Identification of Organic Compounds. Wiley 1991; Moller LJ et al. Overview of Biacore Systems and Their Applications. Curr Protoc Protein Sci 2006; http://www.imperial.ac.uk/people/j.nicholson http://www.nature.com/nprot/journal/v5/n6/abs/nprot.2010.45.html
Língua	Português

Regente


	Carla Patrícia Alves Freire Madeira da Cruz

Curso

Ciências Farmacêuticas

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