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Biomedicina
Rotações Laboratoriais/Clínicas I

Rotações Laboratoriais/Clínicas I

Código	11001
Ano	1
Semestre	S2
Créditos ECTS	5
Carga Horária	TP(40H)
Área Científica	Biomedicina/Medicina/Bioquímica
Tipo de ensino	Presencial
Objectivos de Aprendizagem	a) Compreender os conteúdos e fundamentos teóricos/práticos das técnicas laboratoriais ou clínicas; b) Manipular e executar as técnicas laboratoriais ou clínicas; c) Demonstrar capacidade de compreensão sistemática das técnicas laboratoriais ou clínicas; No final da Unidade Curricular o estudante deve ser capaz de: a) Explicar os fundamentos teóricos/práticos das técnicas laboratoriais ou clínicas; b) Conceber, projetar, adaptar e realizar de modo independente os trabalhos laboratoriais utilizando as técnicas laboratoriais ou clínicas aprendidas nas rotações.
Conteúdos programáticos	r01: Western Blot (2 pontos, 12h) r02: Electroforese de campo pulsado (2 pontos, 16h) r03: Electroforese bidimensional de proteínas (2 pontos, 16h) r04: Imunoprecipitação de proteínas (2 pontos, 16h) r05: Imunocitoquímica (1 ponto, 8h) r06: Imunohistoquímica (2 pontos, 16h) r07: Microscopia de fluorescência (1 ponto, 8h) r08: Imagiologia de cálcio intracelular (1 ponto, 8h) r09: Patch-clamp (1 ponto, 8h) r10: Contractilidade vascular (1 ponto, 8h) r11: Análise da expressão génica por PCR em tempo real (1 ponto, 8h) r12: Culturas primárias (1 ponto, 8h) r13: Culturas de linhas celulares (1 ponto, 8h) r14: Culturas organotípicas (1 ponto, 8h) r15. Citometria de fluxo (1 ponto, 8h) r16: Ensaios de apoptose (1 ponto, 8h) r17: Estudos de citotoxicidade in vitro (1 ponto, 8h) r18: HPLC (1 ponto, 8h) r19: FPLC (1 ponto, 8h) r20: Microcalorimetria de fluxo (1 ponto, 8h) r21: Biosensor (2 pontos, 16h) r22: Administração de compostos a animais (1 ponto, 8h)
Metodologias de Ensino e Critérios de Avaliação	Os estudantes serão avaliados em cada uma das Rotações Laboratoriais/Clínicas através da realização de um teste escrito versando sobre a compreensão dos conteúdos, fundamentos e procedimentos experimentais específicos de cada técnica. A classificação final será a média ponderada da classificação obtida em cada uma das rotações avaliadas em função dos pontos atribuídos a cada uma das rotações laboratoriais.
Bibliografia principal	Bonner P. Basic Bioscience Laboratory Techniques. Willey-Blackwell 2011; Estridge BH. Basic Clinical Laboratory Techniques. Cengage Learning 2011; Longobardi Givan A. Flow Cytometry First Principles 1992; Neher E. The use of the patch clamp technique to study second messenger-mediated cellular events. Neurosci 1998; Snyder LR et al. Introduction to Modern Liquid Chromatography. John Wiley & Sons; Bernard RE. The Regulation of Animal Research and the Emergence of Animal Ethics. Theor. Med. Bioeth 2006; Regine W et al. Principles of Stereotactic Surgery. Springer 2008; Schwartz DC et al.Separation of yeast chromosome-sized DNAs by pulsed field gradient gel electrophoresis. Cell 1984; Silverstein RM et al. Spectrometric Identification of Organic Compounds. Wiley 1991; Moller LJ et al. Overview of Biacore Systems and Their Applications. Curr Protoc Protein Sci 2006; http://www.imperial.ac.uk/people/j.nicholson http://www.nature.com/nprot/journal/v5/n6/abs/nprot.2010.45.html
Língua	Português

Regente

Não tem Fotografia

Carla Patrícia Alves Freire Madeira Cruz

Curso

Biomedicina

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